Q：如何保存合成的多肽？
A：多肽在-20℃很穩定，特別是冷凍干燥并保存在干燥器中，在將它們暴露于空氣之前，冷凍干燥多肽可以放于室溫。這將是濕度影響減少，當無法冷凍干燥時，最好的方法是以小的工作樣量存放�！ �
對于含Cys, Met orTrP的多肽，脫氧緩沖劑對其溶解必不可少，因為這種多肽可易空氣氧化，在封瓶前，慢慢流過多肽的氮氣或氬氣也會降低氧化作用。含Gln或Asn的多肽也容易降解，所有這些肽與不含這些有問題解苷的那些肽相比，生命期有限。
Q：多肽的溶解性怎樣？都溶于哪些溶劑？
A：大多數肽的首選溶劑是超純抽氣水。稀乙酸或氨水分別對于堿性或酸性多肽的溶解很重要。這些方法不溶的多肽，需要DMF（二甲基甲酰胺）、脲、guanidinium（胍鹽）、chloride（氯化物）或acetonitrile（乙腈）來溶解，這些溶劑可能某些實驗有副作用。所以設計多肽時要加注意。
殘基Ala, Cys , Ile, Leu, Met, Phe和Val將全增加多肽的溶解難度�！ �
Q：多肽的保存如何操作？
A：包裝1mg或更少的多肽按凈重包裝，聲明的小瓶重不含相關抗離子和水。例如，氨基酸分析決定的肽含量是80%，在1mg樣品中，那么瓶中毛重是1.25mg。
大量的多肽以毛重算。標出的重量含相關抗離子和水，例如，25mg樣品中肽百分比為90%，那么，實際肽量為25mg×90%=22.5mg 不要把肽含量和純度搞混了。肽的純度可能是100%，而肽含量相關帶電基團（如Arg, Lys ）的抗離子量和肽親水性決定。這是合成肽的本身特性。
所有產品應存于冰箱，最好為-20℃。多數肽以此方法可以存放幾年不變�！ ∪芤弘倪h比凍干形式不穩定，溶液應為中性pH(pH5-7), -20℃保存的，為避免樣品的反復凍融，最好分成小樣存放。一份樣品融凍后未用完，應扔掉，細菌降解有時會成為溶液肽的麻煩，為克服此，肽應溶于無菌水，或肽溶液用0.2μ M濾膜過濾。
Q：如何重建多肽重建過程如何操作？
A：多數肽溶于無菌蒸溜水。初次溶解時，要注意使初始濃度比要求濃度大，如果多肽僅有限溶解性，這便允許加入其它溶解劑或緩沖鹽。如果多肽在水中的溶解性有限，有幾種選擇可幫助溶解： 對堿性肽用稀乙酸（含Arg , Lys , His） 酸性肽用稀氨水（含Asp, Glu） 對極疏水的肽用10%有機修飾物（acetonitrile , Methanol） 極不溶的肽用DM50或DMF guanidine hydrochloride或脲的濃溶液也很有用，與上述方法合用，聲處理也是溶解多肽的有效手段。
Q：HPLC分析是什么？如何利用HPLC純化多肽
A：分析HPLC使用柱子和泵系統，可以經受傳遞高壓，這樣可以用極細的微粒（3-10μ m）做填料。由此多肽要在幾分鐘內高度被分析。
HPLC分兩類：離子交換和反相。離子交換HPLC依靠多肽和固相間的直接電荷相互作用。柱子在一定PH范圍帶有特定電荷衍變成一種離子體，而多肽或多肽混合物，由其氨基酸組成表現出相反電荷。分離是一種電荷相互作用，通過可變PH，離子強度，或兩者洗脫出多肽，通常，先用低離子強度的溶液，以后逐漸加強或一步一步加強，直到多肽火柱中洗脫出。離子交換分離的一個例子使用強陽離子交換柱。如sulfoethylaspartimide通過酸性PH中帶正電來分離。
反相HPLC條件與正常層析正相反。多肽通過疏水作用連到柱上，用降低離子強度洗脫，如增加洗脫劑的疏水性。通常柱子由共價吸附到硅上的碳氫烷鏈構成，這種鏈長度為G4-G8碳原子。由于洗脫是一種疏水作用。長鏈柱比短鏈對小的，高帶電肽好。另一方面大的疏水肽用短鏈柱洗脫好。然而，總體實踐中，這兩類柱互變無多少顯著差別，別類載體由碳水化合物構成，比如苯基。
典型的操作常由兩綬沖劑組成，0.1%TFA-H2o和80% acetonitrile 0.1%TFA--H2o稀acetonitrile。用線型梯變以每分鐘0.5%到1.0%改變的速度混合。常見分析和純化用柱為4.6×250mm(3-10μ m)和22×250mm(10μ m). 如果用徑向填柱，那么大小是8×100（3-10μ m）和25×250mm(10μ m).。大量各種緩沖劑含許多不同試劑，比如heptafluorobutyric酸，0.1%磷酸，稀He formic酸(5-6%, pH2-4), 10-100mM NH4HCO3, 醋酸鈉/氨，TFA/TEA，磷酸鈉或鉀，異戊酚。這樣許多不同組合可形成緩沖劑，但要注意一點：硅反相柱料不能長時間暴露于高pH，甚至微堿pH，因為這樣會破壞柱子。
Q：如何保存合成的多肽？
A：多肽在-20℃很穩定，特別是冷凍干燥并保存在干燥器中，在將它們暴露于空氣之前，冷凍干燥多肽可以放于室溫。這將是濕度影響減少，當無法冷凍干燥時，最好的方法是以小的工作樣量存放�！ �
對于含Cys, Met orTrP的多肽，脫氧緩沖劑對其溶解必不可少，因為這種多肽可易空氣氧化，在封瓶前，慢慢流過多肽的氮氣或氬氣也會降低氧化作用。含Gln或Asn的多肽也容易降解，所有這些肽與不含這些有問題解苷的那些肽相比，生命期有限。
Q：多肽的溶解性怎樣？都溶于哪些溶劑？
A：大多數肽的首選溶劑是超純抽氣水。稀乙酸或氨水分別對于堿性或酸性多肽的溶解很重要。這些方法不溶的多肽，需要DMF（二甲基甲酰胺）、脲、guanidinium（胍鹽）、chloride（氯化物）或acetonitrile（乙腈）來溶解，這些溶劑可能某些實驗有副作用。所以設計多肽時要加注意。
殘基Ala, Cys , Ile, Leu, Met, Phe和Val將全增加多肽的溶解難度�！ �
Q：多肽的保存如何操作？
A：包裝1mg或更少的多肽按凈重包裝，聲明的小瓶重不含相關抗離子和水。例如，氨基酸分析決定的肽含量是80%，在1mg樣品中，那么瓶中毛重是1.25mg。
大量的多肽以毛重算。標出的重量含相關抗離子和水，例如，25mg樣品中肽百分比為90%，那么，實際肽量為25mg×90%=22.5mg 不要把肽含量和純度搞混了。肽的純度可能是100%，而肽含量相關帶電基團（如Arg, Lys ）的抗離子量和肽親水性決定。這是合成肽的本身特性。
所有產品應存于冰箱，最好為-20℃。多數肽以此方法可以存放幾年不變�！ ∪芤弘倪h比凍干形式不穩定，溶液應為中性pH(pH5-7), -20℃保存的，為避免樣品的反復凍融，最好分成小樣存放。一份樣品融凍后未用完，應扔掉，細菌降解有時會成為溶液肽的麻煩，為克服此，肽應溶于無菌水，或肽溶液用0.2μ M濾膜過濾。
Q：如何重建多肽重建過程如何操作？
A：多數肽溶于無菌蒸溜水。初次溶解時，要注意使初始濃度比要求濃度大，如果多肽僅有限溶解性，這便允許加入其它溶解劑或緩沖鹽。如果多肽在水中的溶解性有限，有幾種選擇可幫助溶解： 對堿性肽用稀乙酸（含Arg , Lys , His） 酸性肽用稀氨水（含Asp, Glu） 對極疏水的肽用10%有機修飾物（acetonitrile , Methanol） 極不溶的肽用DM50或DMF guanidine hydrochloride或脲的濃溶液也很有用，與上述方法合用，聲處理也是溶解多肽的有效手段。
Q：HPLC分析是什么？如何利用HPLC純化多肽
A：分析HPLC使用柱子和泵系統，可以經受傳遞高壓，這樣可以用極細的微粒（3-10μ m）做填料。由此多肽要在幾分鐘內高度被分析。
HPLC分兩類：離子交換和反相。離子交換HPLC依靠多肽和固相間的直接電荷相互作用。柱子在一定PH范圍帶有特定電荷衍變成一種離子體，而多肽或多肽混合物，由其氨基酸組成表現出相反電荷。分離是一種電荷相互作用，通過可變PH，離子強度，或兩者洗脫出多肽，通常，先用低離子強度的溶液，以后逐漸加強或一步一步加強，直到多肽火柱中洗脫出。離子交換分離的一個例子使用強陽離子交換柱。如sulfoethylaspartimide通過酸性PH中帶正電來分離。
反相HPLC條件與正常層析正相反。多肽通過疏水作用連到柱上，用降低離子強度洗脫，如增加洗脫劑的疏水性。通常柱子由共價吸附到硅上的碳氫烷鏈構成，這種鏈長度為G4-G8碳原子。由于洗脫是一種疏水作用。長鏈柱比短鏈對小的，高帶電肽好。另一方面大的疏水肽用短鏈柱洗脫好。然而，總體實踐中，這兩類柱互變無多少顯著差別，別類載體由碳水化合物構成，比如苯基。
典型的操作常由兩綬沖劑組成，0.1%TFA-H2o和80% acetonitrile 0.1%TFA--H2o稀acetonitrile。用線型梯變以每分鐘0.5%到1.0%改變的速度混合。常見分析和純化用柱為4.6×250mm(3-10μ m)和22×250mm(10μ m). 如果用徑向填柱，那么大小是8×100（3-10μ m）和25×250mm(10μ m).。大量各種緩沖劑含許多不同試劑，比如heptafluorobutyric酸，0.1%磷酸，稀He formic酸(5-6%, pH2-4), 10-100mM NH4HCO3, 醋酸鈉/氨，TFA/TEA，磷酸鈉或鉀，異戊酚。這樣許多不同組合可形成緩沖劑，但要注意一點：硅反相柱料不能長時間暴露于高pH，甚至微堿pH，因為這樣會破壞柱子。
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